YeaRed核酸染料(10000×DMSO溶液) 油性大分子/无毒核酸染料

YeaRed核酸染料(10000×DMSO溶液) 油性大分子/无毒核酸染料

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FAQ

COA

已发表文献

YeaRed是一种独特的油性大分子,不能穿透细胞膜进入细胞内。不易挥发升华,人体不会吸入。艾姆斯氏测试结果也表明YeaRed在凝胶染色浓度下完全无诱变性,是一种安全无毒的核酸染料。YeaRed与EB具有相同的光谱特性,无需改变滤光片及观察装置(普通紫外凝胶透射仪),在300 nm处紫外光激发检测即可。YeaRed适用于琼脂糖和聚丙烯酰胺凝胶电泳中的dsDNA, ssDNA以及RNA染色,可以选择胶染法或泡染法进行染色,使用非常方便、灵活。

 

运输与保存

冰袋运输;4℃避光干燥保存,有效期2年。

 

使用方法

一、胶染法(同EB,电泳前染色)

1. 配制合适浓度的琼脂糖凝胶,微波炉加热至完全熔化。

2. 加入YeaRed 核酸染料,使用终浓度为1×(即每50 mL 琼脂糖溶液中加入5 μL YeaRed 10,000× DMSO溶液)。

3. 将含有YeaRed核酸染料的琼脂糖溶液倒入制胶器并插好梳子,室温下凝固约30-60 min。

4. 按照常规方法上样并电泳。

5. 紫外拍照观察。

二、泡染法(电泳后染色)

1. 配制合适浓度的琼脂糖凝胶,微波炉加热至完全熔化。

2. 将琼脂糖溶液倒入制胶器并插好梳子,室温下凝固约30-60 min。

3. 按照常规方法上样并电泳。
4. 用0.1 M NaCl溶液稀释YeaRed 10,000× DMSO溶液至3× 染色液(即将15 μL YeaRed 10,000× DMSO溶液加入到50 mL 0.1 M NaCl溶液中,该染液可重复使用3次左右,室温避光保存)。
5. 将凝胶放入合适的容器中,加入3× 染色液浸没凝胶。室温振荡染色30 min左右。染色时间与凝胶厚度及浓度有关(对于3.5~10%聚丙烯酰胺的凝胶,染色时间约30-60 min)。
6. 紫外拍照观察。

 

注意事项

1. 若条带弥散或分离不理想,建议使用泡染法染色以确认问题是否与染料有关。如果染色后问题依旧存在,则说明问题与染料无关。

2. 胶染法不适合预制聚丙烯酰胺凝胶,对于聚丙烯酰胺凝胶请使用泡染法。

3. 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
4. 本产品仅作科研用途!

 

相关产品

产品名称

货号

规格

Goldview核酸染料(10,000×)

10201ES03

1 mL

YeaRed核酸染料(10,000× 水溶液)

10202ES76

500 μL

YeaGreen核酸染料(10,000× 水溶液)

10204ES76

500 μL

Agarose琼脂糖HOT

10208ES60/76

100/500 g

Low Melting Point Agarose 低熔点琼脂糖

10214ES08/25

5/25 g

2000 DNA Marker HOT

10501ES60/80

100/1000 T

HB210824

Q:YeaRed 核酸染料有毒吗?

A:无毒。YeaRed 独特的油性大分子结构使其不能穿透细胞膜进入细胞内,不易挥发升华,人体不会吸入。另外,艾姆斯氏实验结果也表明,YeaRed 在凝胶染色浓度下无诱变性。虽然无毒,不过,在使用这些试剂时,也要遵循实验室安全条例等。

Q:YeaRed 核酸染料只能用于胶染法吗?可以直接加在样品中吗?

A:不是,YeaRed 既可胶染法,也可泡染法进行染色。但不建议直接加在样品里上样。

Q:YeaRed 核酸染料只适用于 DNA 的染色吗?

A:不是,除 dsDNA 和ssDNA 适用外,还适用于RNA 染色。

Q:使用 YeaRed 核酸染料是否需要特殊的观察装置?(波长是否和EB 一样?)

A:不需要。YeaRed 与 EB 有相同的光谱特性,无需改变滤光片及观察装置。在 300 nm 紫外光附近可得到最佳激发。是紫外激发,不能用蓝光成像仪一样。

Q:这个染料需要先稀释再使用吗?

A:不需要稀释的,直接按照比例加入胶中即可被胶溶液稀释到1×

1. Liu C, Zou G, et al. 5-Formyluracil as a Multifunctional Building Block in Biosensor Designs[J]. Angew Chem Int Ed Engl. 2018 Jul 26;57(31):9689-9693.IF 11.992

2. Yang X, Gao F, Zhang W, et al. “Star” miR-34a and CXCR4 antagonist based nanoplex for binary cooperative migration treatment against metastatic breast cancer[J]. Journal of Controlled Release, 2020, 326: 615-627.IF7.727

3. Lin Q, Ye X, Yang B, et al. Real-time fluorescence loop-mediated isothermal amplification assay for rapid and sensitive detection of Streptococcus gallolyticus subsp. gallolyticus associated with colorectal cancer[J]. Analytical and bioanalytical chemistry, 2019, 411(26): 6877-6887.IF6.35

4. Lin Q, Ye X, Huang Z, et al. Graphene Oxide-Based Suppression of Nonspecificity in Loop-Mediated Isothermal Amplification Enabling Sensitive Detection of Cyclooxygenase-2 mRNA in Colorectal Cancer[J]. Analytical chemistry, 2019.IF6.35

5. Wang W, Nie A, Lu Z, et al. Catalytic hairpin assembly-assisted lateral flow assay for visual determination of microRNA-21 using gold nanoparticles[J]. Microchimica Acta, 2019, 186(9): 661.IF5.479

6. Wang H, Chen Y, Zhang J, et al. Using Nrf2/antioxidant response element-dependent signaling to assess the toxicity potential of fly ash particles[J]. Ecotoxicology and environmental safety, 2019, 170: 172-179.IF4.527

7. Wang, J., et al., Delaminated Layered Double Hydroxide Nanosheets as an Efficient Vector for DNA Delivery[J]. J Biomed Nanotechnol, 2016. 12(5): p. 922-33.IF 4.521

8. Cheng H, Fan X, et al. Cyclodextrin-Based Star-Like Amphiphilic Cationic Polymer as a Potential Pharmaceutical Carrier in Macrophages[J]. Macromol Rapid Commun. 2018 May 28:e1800207.IF 4.441

9. Wei, X., et al., GDNF-expressing STO feeder layer supports the long-term propagation of undifferentiated mouse spermatogonia with stem cell properties[J]. Sci Rep, 2016. 6: p. 36779.IF 4.259

10. Liu, N., et al., Development of a multiplex loop-mediated isothermal amplification method for the simultaneous detection of Salmonella spp. and Vibrio parahaemolyticus[J]. Sci Rep, 2017. 7: p. 45601.IF 4.259

YeaRed是一种独特的油性大分子,不能穿透细胞膜进入细胞内。不易挥发升华,人体不会吸入。艾姆斯氏测试结果也表明YeaRed在凝胶染色浓度下完全无诱变性,是一种安全无毒的核酸染料。YeaRed与EB具有相同的光谱特性,无需改变滤光片及观察装置(普通紫外凝胶透射仪),在300 nm处紫外光激发检测即可。YeaRed适用于琼脂糖和聚丙烯酰胺凝胶电泳中的dsDNA, ssDNA以及RNA染色,可以选择胶染法或泡染法进行染色,使用非常方便、灵活。

 

运输与保存

冰袋运输;4℃避光干燥保存,有效期2年。

 

使用方法

一、胶染法(同EB,电泳前染色)

1. 配制合适浓度的琼脂糖凝胶,微波炉加热至完全熔化。

2. 加入YeaRed 核酸染料,使用终浓度为1×(即每50 mL 琼脂糖溶液中加入5 μL YeaRed 10,000× DMSO溶液)。

3. 将含有YeaRed核酸染料的琼脂糖溶液倒入制胶器并插好梳子,室温下凝固约30-60 min。

4. 按照常规方法上样并电泳。

5. 紫外拍照观察。

二、泡染法(电泳后染色)

1. 配制合适浓度的琼脂糖凝胶,微波炉加热至完全熔化。

2. 将琼脂糖溶液倒入制胶器并插好梳子,室温下凝固约30-60 min。

3. 按照常规方法上样并电泳。
4. 用0.1 M NaCl溶液稀释YeaRed 10,000× DMSO溶液至3× 染色液(即将15 μL YeaRed 10,000× DMSO溶液加入到50 mL 0.1 M NaCl溶液中,该染液可重复使用3次左右,室温避光保存)。
5. 将凝胶放入合适的容器中,加入3× 染色液浸没凝胶。室温振荡染色30 min左右。染色时间与凝胶厚度及浓度有关(对于3.5~10%聚丙烯酰胺的凝胶,染色时间约30-60 min)。
6. 紫外拍照观察。

 

注意事项

1. 若条带弥散或分离不理想,建议使用泡染法染色以确认问题是否与染料有关。如果染色后问题依旧存在,则说明问题与染料无关。

2. 胶染法不适合预制聚丙烯酰胺凝胶,对于聚丙烯酰胺凝胶请使用泡染法。

3. 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
4. 本产品仅作科研用途!

 

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Goldview核酸染料(10,000×)

10201ES03

1 mL

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10202ES76

500 μL

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10204ES76

500 μL

Agarose琼脂糖HOT

10208ES60/76

100/500 g

Low Melting Point Agarose 低熔点琼脂糖

10214ES08/25

5/25 g

2000 DNA Marker HOT

10501ES60/80

100/1000 T

HB210824

Q:YeaRed 核酸染料有毒吗?

A:无毒。YeaRed 独特的油性大分子结构使其不能穿透细胞膜进入细胞内,不易挥发升华,人体不会吸入。另外,艾姆斯氏实验结果也表明,YeaRed 在凝胶染色浓度下无诱变性。虽然无毒,不过,在使用这些试剂时,也要遵循实验室安全条例等。

Q:YeaRed 核酸染料只能用于胶染法吗?可以直接加在样品中吗?

A:不是,YeaRed 既可胶染法,也可泡染法进行染色。但不建议直接加在样品里上样。

Q:YeaRed 核酸染料只适用于 DNA 的染色吗?

A:不是,除 dsDNA 和ssDNA 适用外,还适用于RNA 染色。

Q:使用 YeaRed 核酸染料是否需要特殊的观察装置?(波长是否和EB 一样?)

A:不需要。YeaRed 与 EB 有相同的光谱特性,无需改变滤光片及观察装置。在 300 nm 紫外光附近可得到最佳激发。是紫外激发,不能用蓝光成像仪一样。

Q:这个染料需要先稀释再使用吗?

A:不需要稀释的,直接按照比例加入胶中即可被胶溶液稀释到1×

1. Liu C, Zou G, et al. 5-Formyluracil as a Multifunctional Building Block in Biosensor Designs[J]. Angew Chem Int Ed Engl. 2018 Jul 26;57(31):9689-9693.IF 11.992

2. Yang X, Gao F, Zhang W, et al. “Star” miR-34a and CXCR4 antagonist based nanoplex for binary cooperative migration treatment against metastatic breast cancer[J]. Journal of Controlled Release, 2020, 326: 615-627.IF7.727

3. Lin Q, Ye X, Yang B, et al. Real-time fluorescence loop-mediated isothermal amplification assay for rapid and sensitive detection of Streptococcus gallolyticus subsp. gallolyticus associated with colorectal cancer[J]. Analytical and bioanalytical chemistry, 2019, 411(26): 6877-6887.IF6.35

4. Lin Q, Ye X, Huang Z, et al. Graphene Oxide-Based Suppression of Nonspecificity in Loop-Mediated Isothermal Amplification Enabling Sensitive Detection of Cyclooxygenase-2 mRNA in Colorectal Cancer[J]. Analytical chemistry, 2019.IF6.35

5. Wang W, Nie A, Lu Z, et al. Catalytic hairpin assembly-assisted lateral flow assay for visual determination of microRNA-21 using gold nanoparticles[J]. Microchimica Acta, 2019, 186(9): 661.IF5.479

6. Wang H, Chen Y, Zhang J, et al. Using Nrf2/antioxidant response element-dependent signaling to assess the toxicity potential of fly ash particles[J]. Ecotoxicology and environmental safety, 2019, 170: 172-179.IF4.527

7. Wang, J., et al., Delaminated Layered Double Hydroxide Nanosheets as an Efficient Vector for DNA Delivery[J]. J Biomed Nanotechnol, 2016. 12(5): p. 922-33.IF 4.521

8. Cheng H, Fan X, et al. Cyclodextrin-Based Star-Like Amphiphilic Cationic Polymer as a Potential Pharmaceutical Carrier in Macrophages[J]. Macromol Rapid Commun. 2018 May 28:e1800207.IF 4.441

9. Wei, X., et al., GDNF-expressing STO feeder layer supports the long-term propagation of undifferentiated mouse spermatogonia with stem cell properties[J]. Sci Rep, 2016. 6: p. 36779.IF 4.259

10. Liu, N., et al., Development of a multiplex loop-mediated isothermal amplification method for the simultaneous detection of Salmonella spp. and Vibrio parahaemolyticus[J]. Sci Rep, 2017. 7: p. 45601.IF 4.259