内质网绿色荧光探针 活细胞内质网荧光探针|ER-Tracker Green(BODIPY® FL Glibenclamide),for live-cell imaging
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产品描述
ER-Tracker探针是一系列具有细胞膜透过性，对活细胞内质网具有高度选择性的探针，不像传统的DiOC6(3)，该系列探针几乎不对线粒体着色，且在较低浓度即可实现对内质网的染色，且对细胞几乎无毒性。使用以下提供的优化步骤对活细胞染色后用醛固定，可以部分保留活细胞的染色特征。
本品为ER-Tracker Green (BODIPY® FL Glibenclamide)，由绿色荧光染料BODIPY® FL和 Glibenclamide 偶联而成，其Ex= 504 nm，Em= 511nm。格列本脲（Glibenclamide, glyburide），一种常用降血糖药物，在胰岛β细胞、胰岛素的分泌、心肌衰竭细胞功能以及心律不齐的研究等方面具有重要科研用途。格列本脲高度结合ATP-敏感型K+通道的磺脲受体，且本受体富集存在内质网上，因此适合用作内质网荧光探针。
本品为溶于DMSO的1mM ER-Tracker Green (BODIPY® FL Glibenclamide)储存液，推荐工作浓度为～1μM。
产品性质
|
分子式（Formula） |
C37H42BClF2N6O6S |
|
分子量（Molecular Weight） |
783.1 |
|
外观（Appearance） |
液体 |
|
Ex/Em |
504/511nm |
|
滤片（Filter） |
FITC |
|
结构式（Structure） |
|
运输和保存方法
冰袋运输。≤-20℃避光干燥保存，至少六个月有效。避免反复冻融。
注意事项
1）避免反复冻融，可根据单次用量分装保存。避免将本品储存于无霜冰箱。
2）DMSO有毒，请小心操作。
3）为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
4）本产品仅作科研用途！
使用方法
本实验方案经牛肺动脉内皮细胞优化，且已被其他常规细胞系验证。但不同的细胞类型其最佳使用条件不同，还需用户根据该方案进行进一步优化。
1. 试剂准备
使用前将ER-Tracker Green (BODIPY® FL Glibenclamide)回温至室温，并简短离心使该DMSO溶液至管底。
2. 细胞样品处理及染色
2.1 将1mM ER-Tracker Green (BODIPY® FL Glibenclamide)储存液按照实验要求稀释至工作浓度，推荐工作浓度为～1µM。建议在不影响实验结果的前提下尽量使用较低浓度探针，以避免由于浓度过高染色导致的假象。
注：使用含Ca2+、Mg2+ Hank’s 平衡盐溶液（HBSS/Ca/Mg）稀释该探针进行染色，可得到最佳实验结果。
2.2 染色
对于贴壁细胞，吸除培养皿中培养基，用HBSS清洗细胞，加入预热的染料工作液于37℃孵育细胞15-30min。吸除染色液，加入不含探针的新鲜培养液，并在荧光显微镜下观察细胞。
细胞如需固定，请参考以下步骤。
3．细胞固定
3.1 固定细胞：用4%甲醛于37℃固定细胞2min。
注：已染色细胞用醛固定后，仅部分ER-Tracker Green (BODIPY® FL Glibenclamide)留在细胞内，荧光信号会有部分衰减。
3.2 清洗观察细胞：细胞固定后，可用合适缓冲液进行清洗，每次5min，共2次。清洗后可对细胞进行后续封片、镜检或进一步染色。
注：不建议对细胞进行透化处理，因为经Triton X-100透化后，无信号保留。
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500 mL |
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20107ES72 |
Triton X-100 曲拉通X-100 |
250 mL |
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60162ES76 |
1× HBSS (with Ca2+, Mg2+), pH 7.4 |
500 mL |
产品描述
ER-Tracker探针是一系列具有细胞膜透过性，对活细胞内质网具有高度选择性的探针，不像传统的DiOC6(3)，该系列探针几乎不对线粒体着色，且在较低浓度即可实现对内质网的染色，且对细胞几乎无毒性。使用以下提供的优化步骤对活细胞染色后用醛固定，可以部分保留活细胞的染色特征。
本品为ER-Tracker Green (BODIPY® FL Glibenclamide)，由绿色荧光染料BODIPY® FL和 Glibenclamide 偶联而成，其Ex= 504 nm，Em= 511nm。格列本脲（Glibenclamide, glyburide），一种常用降血糖药物，在胰岛β细胞、胰岛素的分泌、心肌衰竭细胞功能以及心律不齐的研究等方面具有重要科研用途。格列本脲高度结合ATP-敏感型K+通道的磺脲受体，且本受体富集存在内质网上，因此适合用作内质网荧光探针。
本品为溶于DMSO的1mM ER-Tracker Green (BODIPY® FL Glibenclamide)储存液，推荐工作浓度为～1μM。
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注意事项
1）避免反复冻融，可根据单次用量分装保存。避免将本品储存于无霜冰箱。
2）DMSO有毒，请小心操作。
3）为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
4）本产品仅作科研用途！
使用方法
本实验方案经牛肺动脉内皮细胞优化，且已被其他常规细胞系验证。但不同的细胞类型其最佳使用条件不同，还需用户根据该方案进行进一步优化。
1. 试剂准备
使用前将ER-Tracker Green (BODIPY® FL Glibenclamide)回温至室温，并简短离心使该DMSO溶液至管底。
2. 细胞样品处理及染色
2.1 将1mM ER-Tracker Green (BODIPY® FL Glibenclamide)储存液按照实验要求稀释至工作浓度，推荐工作浓度为～1µM。建议在不影响实验结果的前提下尽量使用较低浓度探针，以避免由于浓度过高染色导致的假象。
注：使用含Ca2+、Mg2+ Hank’s 平衡盐溶液（HBSS/Ca/Mg）稀释该探针进行染色，可得到最佳实验结果。
2.2 染色
对于贴壁细胞，吸除培养皿中培养基，用HBSS清洗细胞，加入预热的染料工作液于37℃孵育细胞15-30min。吸除染色液，加入不含探针的新鲜培养液，并在荧光显微镜下观察细胞。
细胞如需固定，请参考以下步骤。
3．细胞固定
3.1 固定细胞：用4%甲醛于37℃固定细胞2min。
注：已染色细胞用醛固定后，仅部分ER-Tracker Green (BODIPY® FL Glibenclamide)留在细胞内，荧光信号会有部分衰减。
3.2 清洗观察细胞：细胞固定后，可用合适缓冲液进行清洗，每次5min，共2次。清洗后可对细胞进行后续封片、镜检或进一步染色。
注：不建议对细胞进行透化处理，因为经Triton X-100透化后，无信号保留。
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Q：我们的 40741 线粒体探针可以用于流式实验吗？
A：可以。
Q：请问做流式用哪个通道检测？
A：PE或FL2通道。
[1] Zhou F, Hong Y, Liang R, et al. Rapid printing of bio-inspired 3D tissue constructs for skin regeneration. Biomaterials. 2020;258:120287. doi:10.1016/j.biomaterials.2020.120287(IF:10.317)
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[5] Yu Z, Zhou J, Ji X, et al. Discovery of a Monoiodo Aza-BODIPY Near-Infrared Photosensitizer: in vitro and in vivo Evaluation for Photodynamic Therapy. J Med Chem. 2020;63(17):9950-9964. doi:10.1021/acs.jmedchem.0c00882(IF:6.205)
[6] Zhang Q, Mao S, Khan M, et al. In Situ Partial Treatment of Single Cells by Laminar Flow in the "Open Space". Anal Chem. 2019;91(2):1644-1650. doi:10.1021/acs.analchem.8b05313(IF:6.042)
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