His标签蛋白纯化预装柱5ml|HisSep Ni-NTA 6FF Chromatography Column
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产品简介
HisSep Ni-NTA Agarose Resin 6FF以高度交联的6%琼脂糖凝胶为基质，通过化学方法偶联四配位的氮川三乙酸（NTA）为配体，螯合镍离子（Ni2+）后，形成非常稳定的八面体结构，镍离子处于八面体的中心，这样的结构可保护镍离子免受小分子的进攻，更加稳定，可以耐受一定浓度的还原剂、变性剂或耦合剂等苛刻条件。此外，因其基质的耐压性（该基质可以耐受最高0.3 MPa的压力），该产品可以用于工业大规模蛋白的纯化，可在相对较高的流速下，实现对目的蛋白的纯化。
HisSep Ni-NTA 6FF Chromatography Column是一种以HisSep Ni-NTA Agarose Resin 6FF为填料的中压预装柱，该预装柱具有标准接口，可以适配商品化的各类中压色谱系统，如ÄKTA等，方便客户用于纯化His-tag蛋白。
产品信息
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货号 |
20504JP08 / 20504JP25 |
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规格 |
5 mL /5×5 mL |
产品性质
|
基质（Matrix） |
高度交联的6%琼脂糖凝胶 |
|
粒径（Bead size） |
45-165 µm |
|
载量（Capacity） |
＞40 mg 6×His-tagged protein/mL 基质 |
|
耐压（Tolerance Pressuremax） |
0.3 MPa, 3 bar |
|
储存缓冲液（Buffer） |
含20%乙醇的1×PBS |
|
柱子尺寸（Column Size） |
1.6×2.5 cm（5 mL） |
储存条件
2~8℃保存，有效期2年。
Ver.CN20230323
产品简介
HisSep Ni-NTA Agarose Resin 6FF以高度交联的6%琼脂糖凝胶为基质，通过化学方法偶联四配位的氮川三乙酸（NTA）为配体，螯合镍离子（Ni2+）后，形成非常稳定的八面体结构，镍离子处于八面体的中心，这样的结构可保护镍离子免受小分子的进攻，更加稳定，可以耐受一定浓度的还原剂、变性剂或耦合剂等苛刻条件。此外，因其基质的耐压性（该基质可以耐受最高0.3 MPa的压力），该产品可以用于工业大规模蛋白的纯化，可在相对较高的流速下，实现对目的蛋白的纯化。
HisSep Ni-NTA 6FF Chromatography Column是一种以HisSep Ni-NTA Agarose Resin 6FF为填料的中压预装柱，该预装柱具有标准接口，可以适配商品化的各类中压色谱系统，如ÄKTA等，方便客户用于纯化His-tag蛋白。
产品信息
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货号 |
20504JP08 / 20504JP25 |
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规格 |
5 mL /5×5 mL |
产品性质
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基质（Matrix） |
高度交联的6%琼脂糖凝胶 |
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粒径（Bead size） |
45-165 µm |
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载量（Capacity） |
＞40 mg 6×His-tagged protein/mL 基质 |
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耐压（Tolerance Pressuremax） |
0.3 MPa, 3 bar |
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储存缓冲液（Buffer） |
含20%乙醇的1×PBS |
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柱子尺寸（Column Size） |
1.6×2.5 cm（5 mL） |
储存条件
2~8℃保存，有效期2年。
Ver.CN20230323
Q：该产品的储存缓冲液是什么？
A：含 20%乙醇的 1×PBS。
Q：该产品的载量是多少？
A：>40 mg 6×His-tagged protein/mL 基质。
Q：样品和缓冲液可以直接使用吗？
A：最好不要。建议纯化所用缓冲液和蛋白溶液经 0.22 µm 或 0.45 µm 滤膜过滤后上柱使用。
Q：蛋白纯化所需要的咪唑浓度是多少？
A：这个没有统一标准，具体浓度需要自己在实验中探索。
[1] Dong J, Chen C, Liu Y, et al. Engineering T4 Bacteriophage for In Vivo Display by Type V CRISPR-Cas Genome Editing. ACS Synth Biol. 2021;10(10):2639-2648. doi:10.1021/acssynbio.1c00251(IF:5.110)
[2] Huercha, Song R, Li M, et al. Caracterization of glutathione S-transferase of Dermacantor marginatus and effect of the recombinant antigen as a potential anti-tick vaccine. Vet Parasitol. 2020;279:109043. doi:10.1016/j.vetpar.2020.109043(IF:2.157)
[3] Song R, Zhai X, Fan X, et al. Prediction and validation of cross-protective candidate antigen of Hyalomma asiaticum cathepsin L between H. asiaticum and H. anatolicum. Exp Appl Acarol. 2022;86(2):283-298. doi:10.1007/s10493-022-00689-9(IF:2.132)
[4] Song R, Ge T, Hu E, et al. Recombinant cysteine proteinase as anti-tick targeting Hyalomma asiaticum infestation. Exp Parasitol. 2022;235:108234. doi:10.1016/j.exppara.2022.108234(IF:2.011)