Hifair® III cDNA第一链合成试剂盒(含gDNA去除)|Hifair® III 1st Strand cDNA Synthesis Kit(gDNA digester plus)
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Hifair®III 1st Strand cDNA Synthesis Kit (gDNA digester plus)是含有gDNA去除步骤的cDNA第一链合成试剂盒。该试剂盒基于Hifair®III Reverse Transcriptase而开发。该酶cDNA合成速度快,且热稳定性大幅度提高,可耐受高达60℃的反应温度,适合具有复杂二级结构的RNA模板的逆转录。同时,该酶增强了与模板的亲和力,适合少量模板以及低拷贝基因的逆转录。Hifair®III Reverse Transcriptase合成全长cDNA的能力也有了提升,可合成长达19.8 kb的cDNA。
该试剂盒包含gDNA digester Mix,可去除RNA模板中残留的基因组DNA污染,保证后续结果更加可靠。该试剂盒提供两种cDNA合成引物:Random Primers N6和Oligo (dT)18,用户可根据需要,选择Random Primers N6,Oligo (dT)18或Gene Specific Primers作为逆转录引物,合成的单链cDNA产物可直接用来进行后续PCR或者qPCR反应。
产品信息
货号 |
11139ES10 / 11139ES60 |
规格 |
10 T / 100 T |
组分信息
组分编号 |
组分名称 |
11139ES10 |
11139ES60 |
11139-A |
RNase-free H2O |
1 mL |
2×1 mL |
11139-B |
5×gDNA Digester Mix |
30 μL |
300 μL |
11139-C |
10×Hifair® III Super Buffer* |
20 μL |
200 μL |
11139-D |
Hifair® III RT Enzyme Mix** |
10 μL |
100 μL |
11139-E |
Random Primers N6 (50 μM) |
10 μL |
100 μL |
11139-F |
Oligo (dT)18 (50 μM) |
10 μL |
100 μL |
*10×Hifair® III Super Buffer 包含gDNA digester抑制剂和dNTPs。
** Hifair® III RT Enzyme Mix 包含RNase inhibitor。
储存条件
-25~-15℃避光储存,有效期18个月。
使用说明
1.关于逆转录引物的选择
1)如果模板为真核生物来源,建议选择Oligo (dT)18 ,与真核生物mRNA的3’Poly A尾配对,可获得最高产量的全长cDNA。
2)原核生物RNA的反转录请选用Random Primers N6或者基因特异性引物。
3)Random Primers N6适用性较广,适用于mRNA、rRNA、tRNA、small RNA和LncRNA等模板。
2.第一链cDNA合成操作步骤
1)若实验需要去除残留基因组DNA
a. gDNA消化
在RNase-free离心管中配制如下混合液,用移液器轻轻吹打混匀。42℃孵育2 min。
组分 |
使用量 |
RNase-free H2O |
To 15 μL |
5×gDNA Digester Mix |
3 μL |
Total RNA |
10 pg-5 μg* |
or mRNA |
10 pg-500 ng* |
表1 gDNA消化体系*
*若后续实验为qPCR,Total RNA投入量为10 pg -1 μg;mRNA的投入量为10 pg-100 ng。若基因的表达丰度很低,最多可投入5 ug Total RNA或500 ng mRNA。
b. 逆转录反应体系配制(20 μL体系)
组分 |
使用量 |
上一步的反应液 |
15 μL |
10×Hifair® III Super Buffer |
2 μL |
Hifair® III RT Enzyme Mix |
1 μL |
Random Primers N6 (50 μM) |
1 μL |
or Oligo (dT)18 (50 μM) or Gene Specific Primer (2 μM) |
or 1 μL |
or 1 μL |
|
RNase-free H2O |
to 20 μL |
表2逆转录体系(以20 μL为例)*
*使用前务必充分混匀,避免剧烈震荡产生过多气泡。
1)逆转录引物:后续进行qPCR时,推荐Random Primers N6与Oligo (dT)18 1:1混合使用。
2)建议先加入10×Hifair® III Super Buffer混匀后再添加逆转录引物,以保证完全抑制gDNA digester的活性。
3)体系配制完成后,请用移液器轻轻吹打混匀。
c. 逆转录标准程序设置
温度 |
时间 |
25℃ |
5 min |
55℃ |
15 min |
85℃ |
5 min |
表3逆转录标准程序*
*标准程序设置建议。
1)逆转录温度:推荐使用55℃。对于高GC含量模板或者复杂模板,可将逆转录温度提高到60℃。
2)逆转录时间:后续进行qPCR时,推荐15 min;若后续用于PCR时,推荐30 min-60 min。
d. 逆转录快速程序设置
温度 |
时间 |
55℃ |
15 min |
85℃ |
5 sec |
表4逆转录快速程序*
*逆转录快速程序适用于中低GC含量(≤55%)或者常规模板后续的荧光定量实验。
e. 产物保存
逆转录产物可以-20℃短期保存,若需长期保存,建议分装后,于-80℃保存,避免反复冻融。
2)若实验无需去除残留基因组DNA
a. RNA模板变性
在RNase-free离心管中配制如下混合液,用移液器轻轻吹打混匀。65℃孵育5 min,迅速置于冰上,并静置3 min。
组分 |
使用量 |
RNase-free H2O |
To 17 μL |
Total RNA |
10 pg -5 μg |
or mRNA |
10 pg-500 ng |
Random Primers N6 (50 μM) |
1 μL |
or Oligo (dT)18 (50 μM) or Gene Specific Primer (2 μM) |
or 1 μL |
or 1 μL |
表5 RNA模板变性体系
b. 逆转录反应体系配制(20 μL体系)
组分 |
使用量 |
上一步的反应液 |
17 μL |
10×Hifair® III Super Buffer |
2 μL |
Hifair® III RT Enzyme Mix |
1 μL |
表6逆转录体系(以20 μL为例)*
c. 逆转录标准程序设置
温度 |
时间 |
25℃ |
5 min |
55℃ |
15 min |
85℃ |
5 min |
表7逆转录标准程序*
*标准程序设置建议。
1)逆转录温度:推荐使用55℃。对于高GC含量模板或者复杂模板,可将逆转录温度提高到60℃。
2)逆转录时间:后续进行qPCR时,推荐15 min;若后续用于PCR时,推荐30 min-60 min。
d. 逆转录快速程序设置
温度 |
时间 |
55℃ |
15 min |
85℃ |
5 sec |
表8逆转录快速程序*
*逆转录快速程序适用于中低GC含量(≤55%)或者常规模板后续的荧光定量实验。
e. 产物保存
逆转录产物可以-20℃短期保存,若需长期保存,建议分装后,于-80℃保存,避免反复冻融。
3)miRNA第一链cDNA茎环法合成操作步骤
a. gDNA消化
在RNase-free离心管中配制如下混合液,用移液器轻轻吹打混匀。42℃孵育2 min。
组分 |
使用量 |
RNase-free H2O |
To 15 μL |
5×gDNA Digester Mix |
3 μL |
Total RNA |
10 pg -5 μg |
表9 gDNA消化体系
b. miRNA逆转录反应体系配制(20 μL体系)
组分 |
使用量 |
上一步的反应液 |
15 μL |
10×Hifair® III Super Buffer |
2 μL |
Hifair® III RT Enzyme Mix |
1 μL |
Gene Specific Primer (10 μM) |
1 μL |
RNase-free H2O |
to 20 μL |
表10 miRNA逆转录体系(以20 μL为例)*
*1)建议先加入10×Hifair® III Super Buffer混匀后再添加逆转录引物,以保证完全抑制gDNA digester的活性。
*2)体系配制完成后,请用移液器轻轻吹打混匀。
c. miRNA逆转录标准程序设置
温度 |
时间 |
25℃ |
5 min |
55℃ |
15 min |
85℃ |
5 min |
表11 miRNA标准扩增程序*
*a. 逆转录时间:后续进行qPCR时,推荐15 min;若后续用于PCR时,推荐30 min-60 min。
注意事项
- 反应液的配制应在冰上操作完成,操作过程应避免RNase污染。
- 建议RNA是溶于水而不是TE中,因为TE会干扰gDNA去除以及逆转录反应。
- 5×gDNA digester Mix、10×Hifair® III Super Buffer、Hifair® III RT Enzyme Mix使用前请轻轻上下颠倒混匀,并小心离心至底部。吸取液体时请使用量程合适的移液器,枪头不要插入液面下过深。
- 为了您的安全和健康,请穿实验服并佩戴一次性手套操作。
- qPCR实验推荐基因组去除步骤,保证结果更加真实可靠。
- 本产品仅作科研用途!
Ver.CN20230407
Hifair®III 1st Strand cDNA Synthesis Kit (gDNA digester plus)是含有gDNA去除步骤的cDNA第一链合成试剂盒。该试剂盒基于Hifair®III Reverse Transcriptase而开发。该酶cDNA合成速度快,且热稳定性大幅度提高,可耐受高达60℃的反应温度,适合具有复杂二级结构的RNA模板的逆转录。同时,该酶增强了与模板的亲和力,适合少量模板以及低拷贝基因的逆转录。Hifair®III Reverse Transcriptase合成全长cDNA的能力也有了提升,可合成长达19.8 kb的cDNA。
该试剂盒包含gDNA digester Mix,可去除RNA模板中残留的基因组DNA污染,保证后续结果更加可靠。该试剂盒提供两种cDNA合成引物:Random Primers N6和Oligo (dT)18,用户可根据需要,选择Random Primers N6,Oligo (dT)18或Gene Specific Primers作为逆转录引物,合成的单链cDNA产物可直接用来进行后续PCR或者qPCR反应。
产品信息
货号 |
11139ES10 / 11139ES60 |
规格 |
10 T / 100 T |
组分信息
组分编号 |
组分名称 |
11139ES10 |
11139ES60 |
11139-A |
RNase-free H2O |
1 mL |
2×1 mL |
11139-B |
5×gDNA Digester Mix |
30 μL |
300 μL |
11139-C |
10×Hifair® III Super Buffer* |
20 μL |
200 μL |
11139-D |
Hifair® III RT Enzyme Mix** |
10 μL |
100 μL |
11139-E |
Random Primers N6 (50 μM) |
10 μL |
100 μL |
11139-F |
Oligo (dT)18 (50 μM) |
10 μL |
100 μL |
*10×Hifair® III Super Buffer 包含gDNA digester抑制剂和dNTPs。
** Hifair® III RT Enzyme Mix 包含RNase inhibitor。
储存条件
-25~-15℃避光储存,有效期18个月。
使用说明
1.关于逆转录引物的选择
1)如果模板为真核生物来源,建议选择Oligo (dT)18 ,与真核生物mRNA的3’Poly A尾配对,可获得最高产量的全长cDNA。
2)原核生物RNA的反转录请选用Random Primers N6或者基因特异性引物。
3)Random Primers N6适用性较广,适用于mRNA、rRNA、tRNA、small RNA和LncRNA等模板。
2.第一链cDNA合成操作步骤
1)若实验需要去除残留基因组DNA
a. gDNA消化
在RNase-free离心管中配制如下混合液,用移液器轻轻吹打混匀。42℃孵育2 min。
组分 |
使用量 |
RNase-free H2O |
To 15 μL |
5×gDNA Digester Mix |
3 μL |
Total RNA |
10 pg-5 μg* |
or mRNA |
10 pg-500 ng* |
表1 gDNA消化体系*
*若后续实验为qPCR,Total RNA投入量为10 pg -1 μg;mRNA的投入量为10 pg-100 ng。若基因的表达丰度很低,最多可投入5 ug Total RNA或500 ng mRNA。
b. 逆转录反应体系配制(20 μL体系)
组分 |
使用量 |
上一步的反应液 |
15 μL |
10×Hifair® III Super Buffer |
2 μL |
Hifair® III RT Enzyme Mix |
1 μL |
Random Primers N6 (50 μM) |
1 μL |
or Oligo (dT)18 (50 μM) or Gene Specific Primer (2 μM) |
or 1 μL |
or 1 μL |
|
RNase-free H2O |
to 20 μL |
表2逆转录体系(以20 μL为例)*
*使用前务必充分混匀,避免剧烈震荡产生过多气泡。
1)逆转录引物:后续进行qPCR时,推荐Random Primers N6与Oligo (dT)18 1:1混合使用。
2)建议先加入10×Hifair® III Super Buffer混匀后再添加逆转录引物,以保证完全抑制gDNA digester的活性。
3)体系配制完成后,请用移液器轻轻吹打混匀。
c. 逆转录标准程序设置
温度 |
时间 |
25℃ |
5 min |
55℃ |
15 min |
85℃ |
5 min |
表3逆转录标准程序*
*标准程序设置建议。
1)逆转录温度:推荐使用55℃。对于高GC含量模板或者复杂模板,可将逆转录温度提高到60℃。
2)逆转录时间:后续进行qPCR时,推荐15 min;若后续用于PCR时,推荐30 min-60 min。
d. 逆转录快速程序设置
温度 |
时间 |
55℃ |
15 min |
85℃ |
5 sec |
表4逆转录快速程序*
*逆转录快速程序适用于中低GC含量(≤55%)或者常规模板后续的荧光定量实验。
e. 产物保存
逆转录产物可以-20℃短期保存,若需长期保存,建议分装后,于-80℃保存,避免反复冻融。
2)若实验无需去除残留基因组DNA
a. RNA模板变性
在RNase-free离心管中配制如下混合液,用移液器轻轻吹打混匀。65℃孵育5 min,迅速置于冰上,并静置3 min。
组分 |
使用量 |
RNase-free H2O |
To 17 μL |
Total RNA |
10 pg -5 μg |
or mRNA |
10 pg-500 ng |
Random Primers N6 (50 μM) |
1 μL |
or Oligo (dT)18 (50 μM) or Gene Specific Primer (2 μM) |
or 1 μL |
or 1 μL |
表5 RNA模板变性体系
b. 逆转录反应体系配制(20 μL体系)
组分 |
使用量 |
上一步的反应液 |
17 μL |
10×Hifair® III Super Buffer |
2 μL |
Hifair® III RT Enzyme Mix |
1 μL |
表6逆转录体系(以20 μL为例)*
c. 逆转录标准程序设置
温度 |
时间 |
25℃ |
5 min |
55℃ |
15 min |
85℃ |
5 min |
表7逆转录标准程序*
*标准程序设置建议。
1)逆转录温度:推荐使用55℃。对于高GC含量模板或者复杂模板,可将逆转录温度提高到60℃。
2)逆转录时间:后续进行qPCR时,推荐15 min;若后续用于PCR时,推荐30 min-60 min。
d. 逆转录快速程序设置
温度 |
时间 |
55℃ |
15 min |
85℃ |
5 sec |
表8逆转录快速程序*
*逆转录快速程序适用于中低GC含量(≤55%)或者常规模板后续的荧光定量实验。
e. 产物保存
逆转录产物可以-20℃短期保存,若需长期保存,建议分装后,于-80℃保存,避免反复冻融。
3)miRNA第一链cDNA茎环法合成操作步骤
a. gDNA消化
在RNase-free离心管中配制如下混合液,用移液器轻轻吹打混匀。42℃孵育2 min。
组分 |
使用量 |
RNase-free H2O |
To 15 μL |
5×gDNA Digester Mix |
3 μL |
Total RNA |
10 pg -5 μg |
表9 gDNA消化体系
b. miRNA逆转录反应体系配制(20 μL体系)
组分 |
使用量 |
上一步的反应液 |
15 μL |
10×Hifair® III Super Buffer |
2 μL |
Hifair® III RT Enzyme Mix |
1 μL |
Gene Specific Primer (10 μM) |
1 μL |
RNase-free H2O |
to 20 μL |
表10 miRNA逆转录体系(以20 μL为例)*
*1)建议先加入10×Hifair® III Super Buffer混匀后再添加逆转录引物,以保证完全抑制gDNA digester的活性。
*2)体系配制完成后,请用移液器轻轻吹打混匀。
c. miRNA逆转录标准程序设置
温度 |
时间 |
25℃ |
5 min |
55℃ |
15 min |
85℃ |
5 min |
表11 miRNA标准扩增程序*
*a. 逆转录时间:后续进行qPCR时,推荐15 min;若后续用于PCR时,推荐30 min-60 min。
注意事项
- 反应液的配制应在冰上操作完成,操作过程应避免RNase污染。
- 建议RNA是溶于水而不是TE中,因为TE会干扰gDNA去除以及逆转录反应。
- 5×gDNA digester Mix、10×Hifair® III Super Buffer、Hifair® III RT Enzyme Mix使用前请轻轻上下颠倒混匀,并小心离心至底部。吸取液体时请使用量程合适的移液器,枪头不要插入液面下过深。
- 为了您的安全和健康,请穿实验服并佩戴一次性手套操作。
- qPCR实验推荐基因组去除步骤,保证结果更加真实可靠。
- 本产品仅作科研用途!
Ver.CN20230407
Q:逆转录反应中的引物如何选择?
A:根据实验目的不同,可按下列建议选择(选择指南可见下表):
a)对于全长第一链 cDNA 合成,且模板为真核生物来源,推荐选择Oligo (dT)引物。b)当目标区域具有复杂二级结构或模板为原核生物来源,推荐选择 Random Primers 引物。
c)基因特异性引物(GSP)是与模板序列互补的引物,适用于目的序列已知的情况。d)若逆转录后续为 qPCR 实验,可将 Oligo (dT)与Random Primers 混合使用。
逆转录引物选择指南 |
||||
|
特征 |
优点 |
缺点 |
结合方式 |
Oligo (dT) |
1)12-20 个 T; 2)与真核生物 mRNA 的3 ’ Poly A 尾配对。 |
可 合 成 全长 cDNA。 |
1 ) 仅扩增有 polyA 尾 的 mRNA; 2 ) 对模板质 量 要 求高。 |
|
Random Primers |
1)6-9 个碱基; 2)可随机识别模板并结合。 |
适 合 复 杂结 构 和 微 量模板。 |
特异性低, 小片段多。 |
|
基因特异性 引 物 (GSP) |
识别特定模板序列。 |
特异性强, 灵敏度高。 |
仅 合 成 特定的序列。 |
Q:能否用来做 miRNA/circRNA/lncRNA 的逆转录?
A:有 A 尾的 lncRNA 用预混液和 KIT ( 11123/11141/11121/11139) 都可以, circRNA、miRNA 和无 A 尾的 lncRNA 用 KIT(11121/11139)。microRNA 需要特殊的茎环引物,需特别针对的逆转录试剂盒。
Q:克隆逆转和定量逆转有什么区别?克隆逆转产物和定量逆转产物可以相互吗?
A:a)目的不同:克隆逆转后的 cDNA 后续用于基因克隆,后续实验以普通 PCR 为主; 定量逆转后的 cDNA 后续用于基因定量,后续实验以qPCR 为主。
- 逆转录过程不同:克隆逆转使用 Oligo dT,保证合成的长度。随机引物使用较少; 定量逆转使用 Oligo dT 或随机引物,或两者混合使用。
- 克隆逆转产物可用于 qPCR,但定量逆转产物不推荐用于普通 PCR,定量逆转试剂中含 Oligo (dT)与 Random Primers 混合引物,产物长度较短,可做短片段 PCR,过长的不适合。
Q:逆转录试剂盒可以逆转真菌(或其他物种)RNA 吗?有没有专门针对真菌(或其他物种)的RNA 逆转录的试剂盒呢?
A:RNA 的物种与逆转录没有很大关系,RNA 质量与逆转录有关。所以,得到 RNA 后, 逆转录试剂盒都可以用,没有特别针对的。
Q:RNase 残留降解RNA?
A:原因:若去除试剂中残留 RNase,会使 RNA 发生降解,减少了 RNA 模板量,导致效果差。
检测方法:RNA 去除试剂前后分别进行电泳检测,检测RNA 完整性。优化方法:选用无RNase 级别的 gDNA 去除试剂。
Q: miRNA茎环法逆转录可以用这款产品吗?
A: 可以的,设计特异性引物替代试剂盒中的引物加入到程序中。参考程序如下:
茎环引物(10uM) :1ul
上一步的反应液:15ul
10×super buffer:2ul
RT enzyme mix: 1ul
ddH2O: 1ul
[1] Ba F, Liu Y, Liu WQ, Tian X, Li J. SYMBIOSIS: synthetic manipulable biobricks via orthogonal serine integrase systems. Nucleic Acids Res. 2022;50(5):2973-2985. doi:10.1093/nar/gkac124(IF:16.971)
[2] Zhang Y, Ding H, Wang X, et al. MK2 promotes Tfcp2l1 degradation via β-TrCP ubiquitin ligase to regulate mouse embryonic stem cell self-renewal. Cell Rep. 2021;37(5):109949. doi:10.1016/j.celrep.2021.109949(IF:9.423)
[3] Liu X, Zhan T, Gao Y, et al. Benzophenone-1 induced aberrant proliferation and metastasis of ovarian cancer cells via activated ERα and Wnt/β-catenin signaling pathways. Environ Pollut. 2022;292(Pt B):118370. doi:10.1016/j.envpol.2021.118370(IF:8.071)
[4] Li C, Song J, Guo Z, et al. EZH2 Inhibitors Suppress Colorectal Cancer by Regulating Macrophage Polarization in the Tumor Microenvironment. Front Immunol. 2022;13:857808. Published 2022 Apr 1. doi:10.3389/fimmu.2022.857808(IF:7.561)
[5] Wu Z, Lu Z, Li L, et al. Identification and Validation of Ferroptosis-Related LncRNA Signatures as a Novel Prognostic Model for Colon Cancer. Front Immunol. 2022;12:783362. Published 2022 Jan 26. doi:10.3389/fimmu.2021.783362(IF:7.561)
[6] Zhang Y, Hu R, Xi B, Nie D, Xu H, Liu A. Mechanisms of Senescence-Related NKG2D Ligands Release and Immune Escape Induced by Chemotherapy in Neuroblastoma Cells. Front Cell Dev Biol. 2022;10:829404. Published 2022 Mar 2. doi:10.3389/fcell.2022.829404(IF:6.684)
[7] Zheng XR, Zhang MJ, Qiao YH, et al. Cyclocarya paliurus Reprograms the Flavonoid Biosynthesis Pathway Against Colletotrichum fructicola. Front Plant Sci. 2022;13:933484. Published 2022 Jun 30. doi:10.3389/fpls.2022.933484(IF:6.627)
[8] Tian Q, Zhou LQ. Lactate Activates Germline and Cleavage Embryo Genes in Mouse Embryonic Stem Cells. Cells. 2022;11(3):548. Published 2022 Feb 4. doi:10.3390/cells11030548(IF:6.600)
[9] Zhang W, Lin J, Li J, et al. Rambutan genome revealed gene networks for spine formation and aril development. Plant J. 2021;108(4):1037-1052. doi:10.1111/tpj.15491(IF:6.486)
[10] Fu S, Tan R, Feng Y, et al. N-methyl-N-nitrosourea induces zebrafish anomalous angiogenesis through Wnt/β-catenin pathway [published online ahead of print, 2022 May 25]. Ecotoxicol Environ Saf. 2022;239:113674. doi:10.1016/j.ecoenv.2022.113674(IF:6.291)
[11] Wang G, Wang X, Ma H, et al. PcWRKY11, an II-d WRKY Transcription Factor from Polygonum cuspidatum, Enhances Salt Tolerance in Transgenic Arabidopsis thaliana. Int J Mol Sci. 2022;23(8):4357. Published 2022 Apr 14. doi:10.3390/ijms23084357(IF:5.924)
[12] Xing YJ, Liu BH, Wan SJ, et al. A SGLT2 Inhibitor Dapagliflozin Alleviates Diabetic Cardiomyopathy by Suppressing High Glucose-Induced Oxidative Stress in vivo and in vitro. Front Pharmacol. 2021;12:708177. Published 2021 Jul 12. doi:10.3389/fphar.2021.708177(IF:5.811)
[13] Wei MP, Yu H, Guo YH, Cheng YL, Xie YF, Yao WR. Synergistic antibacterial combination of Sapindoside A and B changes the fatty acid compositions and membrane properties of Cutibacterium acnes [published online ahead of print, 2021 Nov 19]. Microbiol Res. 2021;255:126924. doi:10.1016/j.micres.2021.126924(IF:5.415)
[14] Li N, Chen J, Geng C, et al. Myoglobin promotes macrophage polarization to M1 type and pyroptosis via the RIG-I/Caspase1/GSDMD signaling pathway in CS-AKI. Cell Death Discov. 2022;8(1):90. Published 2022 Feb 28. doi:10.1038/s41420-022-00894-w(IF:5.241)
[15] Zhang Q, Yang R, Tian Y, et al. Ribavirin inhibits cell proliferation and metastasis and prolongs survival in soft tissue sarcomas by downregulating both protein arginine methyltransferases 1 and 5. Basic Clin Pharmacol Toxicol. 2022;131(1):18-33. doi:10.1111/bcpt.13736(IF:4.084)
[16] Wang PT, Li N, Wang XY, et al. RIG-I, a novel DAMPs sensor for myoglobin activates NF-κB/caspase-3 signaling in CS-AKI model. Mil Med Res. 2021;8(1):37. Published 2021 Jun 21. doi:10.1186/s40779-021-00333-4(IF:3.329)
[17] Peng G, Zhu C, Sun Q, et al. Testicular miRNAs and tsRNAs provide insight into gene regulation during overwintering and reproduction of Onychostoma macrolepis. Fish Physiol Biochem. 2022;48(3):481-499. doi:10.1007/s10695-022-01078-0(IF:2.794)
[18] Ye Z, Xu YJ, Liu Y. Influence of different dietary oil consumption on nutrient malabsorption: An animal trial using Sprague Dawley rats. J Food Biochem. 2021;45(4):e13695. doi:10.1111/jfbc.13695(IF:2.720)
[19] Li Y, Qin G, Du J, Yue P, Zhang Y, Hou N. circRNA LDLRAD3 Enhances the Malignant Behaviors of NSCLC Cells via the miR-20a-5p-SLC7A5 Axis Activating the mTORC1 Signaling Pathway. J Healthc Eng. 2022;2022:2373580. Published 2022 Jan 6. doi:10.1155/2022/2373580(IF:2.682)
[20] Peng G, Sun Q, Chen Y, et al. A comprehensive overview of ovarian small non-coding RNAs in the late overwintering and breeding periods of Onychostoma macrolepis. Comp Biochem Physiol Part D Genomics Proteomics. 2022;42:100967. doi:10.1016/j.cbd.2022.100967(IF:2.674)
[21] Xu Y, Peng W, Han D, et al. Maiwei Yangfei decoction prevents bleomycin-induced pulmonary fibrosis in mice. Exp Ther Med. 2021;22(5):1306. doi:10.3892/etm.2021.10741(IF:2.447)