探针法支原体qPCR检测试剂盒|MycAway™ Mycoplasma Real-time qPCR Detection Kit

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探针法支原体qPCR检测试剂盒|MycAway™ Mycoplasma Real-time qPCR Detection Kit

产品说明书

FAQ

COA

已发表文献

MycAway™ 支原体 qPCR 检测试剂盒(探针法)是基于 NAT(nucleic acid amplification techniques)的一种快速定性检测生 产原料、细胞库、病毒种子、病毒或细胞收获液、治疗用细胞中潜在支原体污染的产品。该试剂盒基于定量 PCR 技术 ，采 用多重 PCR 的方法 ，使用 2 种荧光探针 ，  FAM 和 VIC ，分别检测目标序列和内参。  可覆盖 100 多种支原体 DNA 序列；  并 且严格按照 EP 2.6.7 进行专属性、检测限、耐用性验证 ，检测限满足≤10 CFU/mL 的要求 ，具备灵敏度高、特异性好、安全 性好等特点。

本产品能够与利用手动提取方法的 MolPure® 磁珠法残留 DNA 样本前处理试剂盒  (Cat#18461)  搭配使用。样本中的核酸 同样也可以使用 Auto–Pure 32A 全自动核酸提取仪  (Cat#80501)  和 MolPure® 磁珠法残留 DNA 样本前处理试剂盒 FA(预 封装)  (Cat#18462)  自动提取样本核酸  (请注意 ，试剂盒货号 Cat#18461 和 Cat#40618 都已经过完全验证 ，如需详细验证 信息 ，可以联系我司技术支持)  。样本经过前处理去除干扰杂质获得纯化的支原体 DNA 后 ，使用 qPCR 仪进行 qPCR 反应 后收集探针的荧光信号 ，从而对检测结果进行分析。

 

产品信息

货号

40618ES25 / 40618ES60

规格

25T / 100 T

检测限

10 CFU/mL

检测方法

qPCR法(Taqman探针)

检测时长

4小时

荧光探针

FAM(目的通道)   ；VIC(内参通道)

覆盖支原体范围

100 多种

性能验证

根据EP 2.6.7 和 JP G3 进行了性能验证

 

储存条件

-25~-15℃保存 ，有效期 1 年。

*收到货后 ，请检查各组分是否齐全 ，如不立即开封各组分做实验 ，需立即放入-20℃中保存。注意 40618-B 需要避光保存。

 

使用说明详见产品说明书

 

Q：翌圣3种支原体检测产品怎么选择？

A：40601是PCR法，40612是LAMP法，40618是qPCR法。

40612最快1个小时左右出结果，通过颜色变化判断支原体是否污染，覆盖药典要求的6种支原体(药典要求10种），可用于没有qPCR仪的客户使用

40601是通过巢式PCR后跑胶看条带大小判断支原体是否污染，覆盖药典要求的6种支原体(药典要求10种），可用于没有qPCR仪的客户使用

40618是基于Taqman探针的qPCR方法，覆盖药典要求的10种支原体(药典要求10种），根据欧洲日本药典要求进行了试剂盒性能验证，有完整的试剂盒性能报告。所以如果用于放行检测，推荐使用40618试剂盒

这3款试剂盒都是定性检测试剂盒，目前市面上还没有定量试剂盒出来。

Q：试剂盒中的内部质控对照（IC）是什么？为啥pcr的时候需要稀释？

A：IC采用的是外源性内标，不是内参基因，主要用于监控提取和检测过程。他有两个用处，一是作为提取的一个内部质控，一个是作为pcr的内部质控，提取加入进去因为会损失一部分所以浓度需要高些，但是pcr的话浓度过高会竞争性的去目的核酸，ct值会变小。所以是需要稀释的。

Q：我可以不经过提取，直接使用培养基做检测吗？

A：可以不经过提取直接使用培养基来做，但是我们还是建议使用提取过程，因为有些样本里面抑制物会影响扩增结果。

Q：你们的支原体检测试剂盒能检测出拷贝数吗？你们检测下限是多少？

A：我们支原体检测试剂盒是一个定性实验，不能检测出拷贝数，也没有必要检测出拷贝数。我们的检测下限是最低定量限可做到0.5CFU/mL，对应Ct也小于40。

Q：10CFU/ml=10copies/ul是什么意思呢？

A：我们用10CFU/ml的标准菌株，和10copies/ul的试剂盒里的PC进行PCR对标，Ct值是一致的。

[1] Zhao F, Wang X, Li Y, Chen X, Geng Z, Zhang C. Effects of Dietary Supplementation with Epigallocatechin Gallate on Meat Quality and Muscle Antioxidant Capacity of Broilers Subjected to Acute Heat Stress. Animals (Basel). 2021;11(11):3296. Published 2021 Nov 18. doi:10.3390/ani11113296(IF:2.752)

MycAway™ 支原体 qPCR 检测试剂盒(探针法)是基于 NAT(nucleic acid amplification techniques)的一种快速定性检测生 产原料、细胞库、病毒种子、病毒或细胞收获液、治疗用细胞中潜在支原体污染的产品。该试剂盒基于定量 PCR 技术 ，采 用多重 PCR 的方法 ，使用 2 种荧光探针 ，  FAM 和 VIC ，分别检测目标序列和内参。  可覆盖 100 多种支原体 DNA 序列；  并 且严格按照 EP 2.6.7 进行专属性、检测限、耐用性验证 ，检测限满足≤10 CFU/mL 的要求 ，具备灵敏度高、特异性好、安全 性好等特点。

本产品能够与利用手动提取方法的 MolPure® 磁珠法残留 DNA 样本前处理试剂盒  (Cat#18461)  搭配使用。样本中的核酸 同样也可以使用 Auto–Pure 32A 全自动核酸提取仪  (Cat#80501)  和 MolPure® 磁珠法残留 DNA 样本前处理试剂盒 FA(预 封装)  (Cat#18462)  自动提取样本核酸  (请注意 ，试剂盒货号 Cat#18461 和 Cat#40618 都已经过完全验证 ，如需详细验证 信息 ，可以联系我司技术支持)  。样本经过前处理去除干扰杂质获得纯化的支原体 DNA 后 ，使用 qPCR 仪进行 qPCR 反应 后收集探针的荧光信号 ，从而对检测结果进行分析。

 

产品信息

货号

40618ES25 / 40618ES60

规格

25T / 100 T

检测限

10 CFU/mL

检测方法

qPCR法(Taqman探针)

检测时长

4小时

荧光探针

FAM(目的通道)   ；VIC(内参通道)

覆盖支原体范围

100 多种

性能验证

根据EP 2.6.7 和 JP G3 进行了性能验证

 

储存条件

-25~-15℃保存 ，有效期 1 年。

*收到货后 ，请检查各组分是否齐全 ，如不立即开封各组分做实验 ，需立即放入-20℃中保存。注意 40618-B 需要避光保存。

 

使用说明详见产品说明书

 

Q：翌圣3种支原体检测产品怎么选择？

A：40601是PCR法，40612是LAMP法，40618是qPCR法。

40612最快1个小时左右出结果，通过颜色变化判断支原体是否污染，覆盖药典要求的6种支原体(药典要求10种），可用于没有qPCR仪的客户使用

40601是通过巢式PCR后跑胶看条带大小判断支原体是否污染，覆盖药典要求的6种支原体(药典要求10种），可用于没有qPCR仪的客户使用

40618是基于Taqman探针的qPCR方法，覆盖药典要求的10种支原体(药典要求10种），根据欧洲日本药典要求进行了试剂盒性能验证，有完整的试剂盒性能报告。所以如果用于放行检测，推荐使用40618试剂盒

这3款试剂盒都是定性检测试剂盒，目前市面上还没有定量试剂盒出来。

Q：试剂盒中的内部质控对照（IC）是什么？为啥pcr的时候需要稀释？

A：IC采用的是外源性内标，不是内参基因，主要用于监控提取和检测过程。他有两个用处，一是作为提取的一个内部质控，一个是作为pcr的内部质控，提取加入进去因为会损失一部分所以浓度需要高些，但是pcr的话浓度过高会竞争性的去目的核酸，ct值会变小。所以是需要稀释的。

Q：我可以不经过提取，直接使用培养基做检测吗？

A：可以不经过提取直接使用培养基来做，但是我们还是建议使用提取过程，因为有些样本里面抑制物会影响扩增结果。

Q：你们的支原体检测试剂盒能检测出拷贝数吗？你们检测下限是多少？

A：我们支原体检测试剂盒是一个定性实验，不能检测出拷贝数，也没有必要检测出拷贝数。我们的检测下限是最低定量限可做到0.5CFU/mL，对应Ct也小于40。

Q：10CFU/ml=10copies/ul是什么意思呢？

A：我们用10CFU/ml的标准菌株，和10copies/ul的试剂盒里的PC进行PCR对标，Ct值是一致的。

[1] Zhao F, Wang X, Li Y, Chen X, Geng Z, Zhang C. Effects of Dietary Supplementation with Epigallocatechin Gallate on Meat Quality and Muscle Antioxidant Capacity of Broilers Subjected to Acute Heat Stress. Animals (Basel). 2021;11(11):3296. Published 2021 Nov 18. doi:10.3390/ani11113296(IF:2.752)