2×实时定量PCR扩增预混液|Hieff UNICON® qPCR SYBR Green Master Mix(抗体法,Low Rox)

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2×实时定量PCR扩增预混液|Hieff UNICON® qPCR SYBR Green Master Mix(抗体法,Low Rox)

产品说明书

FAQ

COA

已发表文献

产品简介

 

本产品是2×实时定量PCR扩增的预混合溶液。采用的抗体法热启动DNA聚合酶（货号：10113ES），在预变性温度（95℃）加热30sec，UNICON® Taq抗体失活，释放出Taq DNA Polymerase活性。抗体法热启动Taq酶可以有效抑制引物非特异性退火导致的扩增。同时，配方优化了有效抑制非特异性PCR扩增的因子和提升PCR反应扩增效率的因子，适合低浓度模板的扩增，使定量PCR可以在宽广的定量区域内获得良好的标准曲线。

Mix中含有Hieff® Taq DNA Polymerase、UNICON® Taq抗体、SYBR Green I、dNTPs、Mg2+及Low Rox。使用时，仅需在扩增体系中加入模板和引物即可进行实时荧光定量PCR，大大简化操作过程，降低污染几率。

 

产品信息

 

货号

11199ES03 / 11199ES08 / 11199ES25 / 11199ES50 / 11199ES60

规格

1 mL / 5×1 mL / 5×5 mL / 10×5 mL / 20×5 mL

 

储存条件

 

-25~-15℃避光保存，有效期18个月。本品避免反复冻融。产品中含有荧光染料SYBR Green I，保存或配制反应体系时需避免强光照射。  

 

使用说明

 

  1. 反应体系（推荐冰上配制）

组分

体积 (μL)****

体积 (μL)

终浓度

Hieff UNICON® qPCR SYBR Green Master Mix (抗体法，Low Rox)*

25

10

1×

Forward Primer (10 μM)**

1

0.4

0.2 μM

Reverse Primer (10 μM)**

1

0.4

0.2 μM

模板DNA***

X

X

–

RNase Free H2O

to 50

to 20

–

*使用前务必充分混匀，避免剧烈震荡产生过多气泡。

**通常引物终浓度为0.2 μM，也可以根据情况在0.1-1.0 μM之间进行调整。

***如模板类型为未稀释cDNA原液，使用体积不应超过qPCR反应总体积的1/10。cDNA原液建议5-10倍稀释，最佳模板加入量以扩增得到的CT值在20-30个循环为好。

****推荐使用20 μL或50 μL总体积，以保证目的基因扩增的有效性和重复性。

  1. 扩增程序*
  1. 两步法

循环步骤

温度

时间

循环数

预变性**

95℃

30 sec

1

变性

95℃

10 sec

40

退火/延伸***

60℃

30 sec****

熔解曲线阶段*****

仪器默认设置

1

2）三步法

循环步骤

温度

时间

循环数

预变性**

95℃

30 sec

1

变性

95℃

10 sec

40

退火***

55-60℃

20 sec

延伸

72℃

20 sec****

熔解曲线阶段*****

仪器默认设置

1

*高特异性可选择两步法，高效率扩增可选择三步法。

**预变性时间可根据不同模板和引物的具体情况适当增加至3-5 min。

***退火温度和时间请根据引物和目的基因的长度进行调整。

****荧光信号采集请按照仪器使用说明书要求进行实验程序设置，几种常见仪器的时间设定如下：

30sec以上：Applied Biosystems: StepOne, StepOne Plus, 7500 Fast；Roche Applied Science: LightCycler 480；Bio-Rad: CFX96

31sec以上：Applied Biosystems: 7300

34sec以上：Applied Biosystems: 7500

*****熔解曲线通常情况下可以使用仪器默认程序。

  1. 结果分析

定量实验至少需要三个生物学重复。反应结束后需要确认扩增曲线及熔解曲线。

1）扩增曲线

  1. Ct值落在20-30之间时，定量分析最准确；
  2. Ct值小于10，需要将稀释模板后，重新进行实验；
  3. Ct值介于30-35之间时，需要提高模板浓度，或增大反应体系的体积，以提高扩增效率，保证结果分析的准确性；
  4. Ct值大于35时，检测结果无法定量分析基因的表达量，但可用于定性分析。

2）熔解曲线

a.   熔解曲线单峰，表明反应特异性好可以进行定量结果分析；若熔解曲线出现双峰或者多峰，则不能进行定量分析。

b.   熔解曲线出现双峰，需要通过DNA琼脂糖凝胶电泳判断非目标峰是引物二聚体还是非特异性扩增。

c.   如果是引物二聚体，建议降低引物浓度，或者重新设计扩增效率高的引物。

d.   如果是非特异性扩增，请提高退火温度，或者重新设计更高特异性的引物。

  1. 引物设计指南

1） 推荐引物长度25 bp左右。扩增产物长度150 bp为佳，可以在100 bp-300 bp内选择。

2） 正向引物和反向引物的Tm值相差不宜超过2℃。引物Tm值60℃-65℃为佳。

3)  引物碱基分布要均匀，避免出现连续的4个相同碱基，GC含量控制在50%左右。3’端最后一个碱基最好为G或C。

4)  引物内部或者正反两条引物间最好避免出现有3个碱基以上的互补序列。

5)  引物特异性需要用NCBI BLAST程序进行核对。避免引物3’端有2个碱基以上的非特异性互补。

6)  设计完成的引物需要进行扩增效率的检测，只有具备相同扩增效率的引物才可用于定量比较分析。

5. 适用机型

Applied Biosystems: 7500, 7500 Fast, ViiA7, QuantStudio Dx, QuantStudio 3 and 5, QuantStudio 6,7,12k Flex;

Stratagene: MX3000P, MX3005P, MX4000.

 

注意事项

 

  1. 推荐使用本公司cDNA合成试剂盒（Cat#11141），以有效去除RNA样品中残留的基因组。
  2. 解冻后Master Mix可能出现絮状物质，4℃放置并上下颠倒混匀至溶液澄清，不影响试剂性能。
  3. 为了您的安全和健康，请穿实验服并佩戴一次性手套操作。
  4. 本产品仅作科研用途。

 

Ver.CN20231128

 

Q1:模板用量X 是多少？常用的量是多少？

A:(1)X 表示模板 DNA 量需要实验者在首次实验时进行摸索。首先对模板DNA 进行稀释（一般推荐 5–10 倍），然后模板量梯度上样，选择 CT 值落在  20–30  之间的最佳上样量。

(2)常用的量是逆转录 500–1000ng 总RNA，稀释 10 倍取 1μL cDNA 进行qPCR 实验。

Q2:qPCR 实验结果的有效性？为什么建议Ct 值要大于 15？

A🙁1)有效性要满足三个条件：（1）标准曲线：扩增效率范围:90–110%，对应斜率为-3–3.5。R2＞0.98。 (扩增效率=10-1/斜率-1)，当斜率=-3.32 时，扩增效率=100%。
（2）扩增曲线：S 型曲线，且 Ct 值在 15－35 之间，阴性对照 Ct＞35 或无Ct 值。
（3） 熔解曲线：为单一峰。(2)3-15 个循环的荧光值标准差的 10 倍是荧光阈值，Ct 值太小了会影响曲线。

Q3:Rox 的作用？

A:ROX 是一种参比染料，其作用是标准化荧光定量反应中的非PCR 震荡，校正加样误差或者是孔与孔之间的误差，提供一个稳定的基线。

Q4:为什么扩增曲线不稳定（扩增曲线平台期锯齿状）？
A:可能原因：a）RNA 纯度低，体系中存在较多杂质；推荐参数：OD260/OD280=1.8–2.0， OD260/OD230＞2.0。随着 qPCR 反应的进行，阻碍反应的因素不断增加，若 RNA 纯度低，杂质多，会进一步影响仪器平台期的算法，导致出现锯齿状。

b）仪器长时间未做校准。仪器未校准会使仪器算法错误，导致各种异常结果。

解决方案：a）先梯度加大模板稀释倍数看优化效果。若效果仍不好建议新制备高纯度RNA 重新实验。

b） 定期（一般 1 年）进行仪器校准保养。

Q5:为什么扩增曲线无法达到平台期？

A:可能原因：a）模板量太低（CT 值 35 左右）。推荐 Ct 值：15＜Ct＜30。原因：Ct 值太大（如  Ct＞30），刚进入指数扩增期几个循环就停止了反应，故无法到达平台期。
b）循环次数太少（30 cycles）；循环次数过少（如 35）导致刚进入指数扩增期几个循环就停止了反应，故无法到达平台期。
c） 试剂扩增效率低（CT 小，但无法达到平台期，曲线比较“趴”）。
解决方案：a）提高模板量；参考 Q1 的优化方法。

b）提高循环次数；推荐循环数：一般 40。低丰度基因可设 45。
c）做标准曲线测定扩增效率，若确实偏低，则换试剂。

d）增加 Mg2+浓度（会增加非特异扩增）

Q6:为什么出现双峰，并且较低峰 Tm 在 80℃之前？

A:较低峰 Tm 在 80℃之前可能原因：存在引物二聚体（一般mRNA 反转录后定量，产物在 100-150bp 左右，峰对应 Tm 值为 80-90℃。若有引物二聚体存在，引物二聚体大小只有几十bp，峰对应 Tm 值在 70-80℃之间。故会在 80℃以前出现一个峰， 80℃以后出现一个峰），模板浓度过低或引物浓度过高。

解决方案：a）适当提高退火温度； b）提高模板量，降低引物浓度； c）重新设计引物。

Q7:为什么出现双峰，双峰 Tm 都在 80℃以前？

A:双峰Tm 都在 80℃以前的可能原因：做 MicroRNA 定量时存在引物二聚体。Micro RNA 反转录后定量， 产物在 80-90bp 左右，峰对应Tm 值为 70-80℃，若有引物二聚体存在，引物二聚体大小只有几十 bp，峰对应 Tm 值也在 70-80℃之间。故会在 80℃ 以前出现双峰。

优化方法：提高退火温度、降低引物浓度或重新设计引物等方式优化。Q8:为什么出现双峰，并且双峰Tm 都在 80℃以后？

A:可能原因：a）引物特异性过差导致非特异性产物扩增。
b）交叉污染。

c）gDNA 污染，可通过 NRC 进行确认。

解决方案：a）Blast 检查引物特异性，差则重新设计引物。
b）超净台中操作，注意更换 Tip 头，避免交叉污染。

c）通过 NRC 阴性对照进行确认，若有，需重新制备模板。

Q9:为什么是单峰，但 Tm 在 80℃之前？

A:可能原因：扩增产物是完全的引物二聚体，可能是未加模板。

注：若 microRNA，则结果正常（做 microRNA 定量时存在引物二聚体。micro RNA 反转录后定量， 产物在 80-90bp 左右，峰对应 Tm 值为 70-80℃，若有引物二聚体存在，引物二聚体大小只有几十bp，峰对应 Tm 值也在 70-80℃之间。故会在 80℃以前出现双峰）。

解决方案：进行高分辨率琼脂糖电泳，检测有无目的条带，以确定模板是否加入。优化方法：新配制无误的反应体系，重新实验。

Q10:为什么是单峰，但峰不尖锐？

A:可能原因：存在大小相近的非特异性扩增

解决方案：a）温度跨度不高于 7℃，视为可用结果（即 Tm 值跨度＜7℃可认为是同一种产物）；

b）进行高浓度琼脂糖电泳（高分辨率），确认是否为单一条带。

[1] Qin Q, Shou J, Li M, et al. Stk24 protects against obesity-associated metabolic disorders by disrupting the NLRP3 inflammasome. Cell Rep. 2021;35(8):109161. doi:10.1016/j.celrep.2021.109161(IF:9.423)
[2] Wu S, Guo X, Zhou J, et al. High expression of UNC5B enhances tumor proliferation, increases metastasis, and worsens prognosis in breast cancer [published online ahead of print, 2020 Sep 9]. Aging (Albany NY). 2020;12(17):17079-17098. doi:10.18632/aging.103639(IF:5.682)
[3] Chen Y, Huang X, Zhu K, et al. LIMD2 is a Prognostic and Predictive Marker in Patients With Esophageal Cancer Based on a ceRNA Network Analysis. Front Genet. 2021;12:774432. Published 2021 Nov 18. doi:10.3389/fgene.2021.774432(IF:4.599)
[4] Pan J, Ren Q, Yang Z, et al. The effect of melatonin on the mouse ameloblast-lineage cell line ALCs. Sci Rep. 2022;12(1):8225. Published 2022 May 17. doi:10.1038/s41598-022-11912-3(IF:4.380)
[5] Li W, Zhang Z, Zhang L, et al. Antiviral Role of Serine Incorporator 5 (SERINC5) Proteins in Classical Swine Fever Virus Infection. Front Microbiol. 2020;11:580233. Published 2020 Sep 4. doi:10.3389/fmicb.2020.580233(IF:4.236)
[6] Hu F, Li C, Zheng X, et al. Lung adenocarcinoma resistance to therapy with EGFR‑tyrosine kinase inhibitors is related to increased expression of cancer stem cell markers SOX2, OCT4 and NANOG. Oncol Rep. 2020;43(2):727-735. doi:10.3892/or.2019.7454(IF:3.417)
[7] Zhao Y, Castro LFC, Monroig Ó, Cao X, Sun Y, Gao J. A zebrafish pparγ gene deletion reveals a protein kinase network associated with defective lipid metabolism [published online ahead of print, 2022 Mar 15]. Funct Integr Genomics. 2022;10.1007/s10142-022-00839-7. doi:10.1007/s10142-022-00839-7(IF:3.410)
[8] Zhang H, Yang X, Hu F, et al. Expression Level of Wnt5a Was Related to the Therapeutic Effects of First-Generation EGFR-TKIs. Onco Targets Ther. 2020;13:5387-5394. Published 2020 Jun 11. doi:10.2147/OTT.S250024(IF:3.337)
[9] Xie J, Cai Z, Zheng W, Zhang H. Integrated analysis of miRNA and mRNA expression profiles in response to gut microbiota depletion in the abdomens of female Bactrocera dorsalis [published online ahead of print, 2022 Jun 25]. Insect Sci. 2022;10.1111/1744-7917.13091. doi:10.1111/1744-7917.13091(IF:3.262)

产品简介

 

本产品是2×实时定量PCR扩增的预混合溶液。采用的抗体法热启动DNA聚合酶（货号：10113ES），在预变性温度（95℃）加热30sec，UNICON® Taq抗体失活，释放出Taq DNA Polymerase活性。抗体法热启动Taq酶可以有效抑制引物非特异性退火导致的扩增。同时，配方优化了有效抑制非特异性PCR扩增的因子和提升PCR反应扩增效率的因子，适合低浓度模板的扩增，使定量PCR可以在宽广的定量区域内获得良好的标准曲线。

Mix中含有Hieff® Taq DNA Polymerase、UNICON® Taq抗体、SYBR Green I、dNTPs、Mg2+及Low Rox。使用时，仅需在扩增体系中加入模板和引物即可进行实时荧光定量PCR，大大简化操作过程，降低污染几率。

 

产品信息

 

货号

11199ES03 / 11199ES08 / 11199ES25 / 11199ES50 / 11199ES60

规格

1 mL / 5×1 mL / 5×5 mL / 10×5 mL / 20×5 mL

 

储存条件

 

-25~-15℃避光保存，有效期18个月。本品避免反复冻融。产品中含有荧光染料SYBR Green I，保存或配制反应体系时需避免强光照射。  

 

使用说明

 

  1. 反应体系（推荐冰上配制）

组分

体积 (μL)****

体积 (μL)

终浓度

Hieff UNICON® qPCR SYBR Green Master Mix (抗体法，Low Rox)*

25

10

1×

Forward Primer (10 μM)**

1

0.4

0.2 μM

Reverse Primer (10 μM)**

1

0.4

0.2 μM

模板DNA***

X

X

–

RNase Free H2O

to 50

to 20

–

*使用前务必充分混匀，避免剧烈震荡产生过多气泡。

**通常引物终浓度为0.2 μM，也可以根据情况在0.1-1.0 μM之间进行调整。

***如模板类型为未稀释cDNA原液，使用体积不应超过qPCR反应总体积的1/10。cDNA原液建议5-10倍稀释，最佳模板加入量以扩增得到的CT值在20-30个循环为好。

****推荐使用20 μL或50 μL总体积，以保证目的基因扩增的有效性和重复性。

  1. 扩增程序*
  1. 两步法

循环步骤

温度

时间

循环数

预变性**

95℃

30 sec

1

变性

95℃

10 sec

40

退火/延伸***

60℃

30 sec****

熔解曲线阶段*****

仪器默认设置

1

2）三步法

循环步骤

温度

时间

循环数

预变性**

95℃

30 sec

1

变性

95℃

10 sec

40

退火***

55-60℃

20 sec

延伸

72℃

20 sec****

熔解曲线阶段*****

仪器默认设置

1

*高特异性可选择两步法，高效率扩增可选择三步法。

**预变性时间可根据不同模板和引物的具体情况适当增加至3-5 min。

***退火温度和时间请根据引物和目的基因的长度进行调整。

****荧光信号采集请按照仪器使用说明书要求进行实验程序设置，几种常见仪器的时间设定如下：

30sec以上：Applied Biosystems: StepOne, StepOne Plus, 7500 Fast；Roche Applied Science: LightCycler 480；Bio-Rad: CFX96

31sec以上：Applied Biosystems: 7300

34sec以上：Applied Biosystems: 7500

*****熔解曲线通常情况下可以使用仪器默认程序。

  1. 结果分析

定量实验至少需要三个生物学重复。反应结束后需要确认扩增曲线及熔解曲线。

1）扩增曲线

  1. Ct值落在20-30之间时，定量分析最准确；
  2. Ct值小于10，需要将稀释模板后，重新进行实验；
  3. Ct值介于30-35之间时，需要提高模板浓度，或增大反应体系的体积，以提高扩增效率，保证结果分析的准确性；
  4. Ct值大于35时，检测结果无法定量分析基因的表达量，但可用于定性分析。

2）熔解曲线

a.   熔解曲线单峰，表明反应特异性好可以进行定量结果分析；若熔解曲线出现双峰或者多峰，则不能进行定量分析。

b.   熔解曲线出现双峰，需要通过DNA琼脂糖凝胶电泳判断非目标峰是引物二聚体还是非特异性扩增。

c.   如果是引物二聚体，建议降低引物浓度，或者重新设计扩增效率高的引物。

d.   如果是非特异性扩增，请提高退火温度，或者重新设计更高特异性的引物。

  1. 引物设计指南

1） 推荐引物长度25 bp左右。扩增产物长度150 bp为佳，可以在100 bp-300 bp内选择。

2） 正向引物和反向引物的Tm值相差不宜超过2℃。引物Tm值60℃-65℃为佳。

3)  引物碱基分布要均匀，避免出现连续的4个相同碱基，GC含量控制在50%左右。3’端最后一个碱基最好为G或C。

4)  引物内部或者正反两条引物间最好避免出现有3个碱基以上的互补序列。

5)  引物特异性需要用NCBI BLAST程序进行核对。避免引物3’端有2个碱基以上的非特异性互补。

6)  设计完成的引物需要进行扩增效率的检测，只有具备相同扩增效率的引物才可用于定量比较分析。

5. 适用机型

Applied Biosystems: 7500, 7500 Fast, ViiA7, QuantStudio Dx, QuantStudio 3 and 5, QuantStudio 6,7,12k Flex;

Stratagene: MX3000P, MX3005P, MX4000.

 

注意事项

 

  1. 推荐使用本公司cDNA合成试剂盒（Cat#11141），以有效去除RNA样品中残留的基因组。
  2. 解冻后Master Mix可能出现絮状物质，4℃放置并上下颠倒混匀至溶液澄清，不影响试剂性能。
  3. 为了您的安全和健康，请穿实验服并佩戴一次性手套操作。
  4. 本产品仅作科研用途。

 

Ver.CN20231128

 

Q1:模板用量X 是多少？常用的量是多少？

A:(1)X 表示模板 DNA 量需要实验者在首次实验时进行摸索。首先对模板DNA 进行稀释（一般推荐 5–10 倍），然后模板量梯度上样，选择 CT 值落在  20–30  之间的最佳上样量。

(2)常用的量是逆转录 500–1000ng 总RNA，稀释 10 倍取 1μL cDNA 进行qPCR 实验。

Q2:qPCR 实验结果的有效性？为什么建议Ct 值要大于 15？

A🙁1)有效性要满足三个条件：（1）标准曲线：扩增效率范围:90–110%，对应斜率为-3–3.5。R2＞0.98。 (扩增效率=10-1/斜率-1)，当斜率=-3.32 时，扩增效率=100%。
（2）扩增曲线：S 型曲线，且 Ct 值在 15－35 之间，阴性对照 Ct＞35 或无Ct 值。
（3） 熔解曲线：为单一峰。(2)3-15 个循环的荧光值标准差的 10 倍是荧光阈值，Ct 值太小了会影响曲线。

Q3:Rox 的作用？

A:ROX 是一种参比染料，其作用是标准化荧光定量反应中的非PCR 震荡，校正加样误差或者是孔与孔之间的误差，提供一个稳定的基线。

Q4:为什么扩增曲线不稳定（扩增曲线平台期锯齿状）？
A:可能原因：a）RNA 纯度低，体系中存在较多杂质；推荐参数：OD260/OD280=1.8–2.0， OD260/OD230＞2.0。随着 qPCR 反应的进行，阻碍反应的因素不断增加，若 RNA 纯度低，杂质多，会进一步影响仪器平台期的算法，导致出现锯齿状。

b）仪器长时间未做校准。仪器未校准会使仪器算法错误，导致各种异常结果。

解决方案：a）先梯度加大模板稀释倍数看优化效果。若效果仍不好建议新制备高纯度RNA 重新实验。

b） 定期（一般 1 年）进行仪器校准保养。

Q5:为什么扩增曲线无法达到平台期？

A:可能原因：a）模板量太低（CT 值 35 左右）。推荐 Ct 值：15＜Ct＜30。原因：Ct 值太大（如  Ct＞30），刚进入指数扩增期几个循环就停止了反应，故无法到达平台期。
b）循环次数太少（30 cycles）；循环次数过少（如 35）导致刚进入指数扩增期几个循环就停止了反应，故无法到达平台期。
c） 试剂扩增效率低（CT 小，但无法达到平台期，曲线比较“趴”）。
解决方案：a）提高模板量；参考 Q1 的优化方法。

b）提高循环次数；推荐循环数：一般 40。低丰度基因可设 45。
c）做标准曲线测定扩增效率，若确实偏低，则换试剂。

d）增加 Mg2+浓度（会增加非特异扩增）

Q6:为什么出现双峰，并且较低峰 Tm 在 80℃之前？

A:较低峰 Tm 在 80℃之前可能原因：存在引物二聚体（一般mRNA 反转录后定量，产物在 100-150bp 左右，峰对应 Tm 值为 80-90℃。若有引物二聚体存在，引物二聚体大小只有几十bp，峰对应 Tm 值在 70-80℃之间。故会在 80℃以前出现一个峰， 80℃以后出现一个峰），模板浓度过低或引物浓度过高。

解决方案：a）适当提高退火温度； b）提高模板量，降低引物浓度； c）重新设计引物。

Q7:为什么出现双峰，双峰 Tm 都在 80℃以前？

A:双峰Tm 都在 80℃以前的可能原因：做 MicroRNA 定量时存在引物二聚体。Micro RNA 反转录后定量， 产物在 80-90bp 左右，峰对应Tm 值为 70-80℃，若有引物二聚体存在，引物二聚体大小只有几十 bp，峰对应 Tm 值也在 70-80℃之间。故会在 80℃ 以前出现双峰。

优化方法：提高退火温度、降低引物浓度或重新设计引物等方式优化。Q8:为什么出现双峰，并且双峰Tm 都在 80℃以后？

A:可能原因：a）引物特异性过差导致非特异性产物扩增。
b）交叉污染。

c）gDNA 污染，可通过 NRC 进行确认。

解决方案：a）Blast 检查引物特异性，差则重新设计引物。
b）超净台中操作，注意更换 Tip 头，避免交叉污染。

c）通过 NRC 阴性对照进行确认，若有，需重新制备模板。

Q9:为什么是单峰，但 Tm 在 80℃之前？

A:可能原因：扩增产物是完全的引物二聚体，可能是未加模板。

注：若 microRNA，则结果正常（做 microRNA 定量时存在引物二聚体。micro RNA 反转录后定量， 产物在 80-90bp 左右，峰对应 Tm 值为 70-80℃，若有引物二聚体存在，引物二聚体大小只有几十bp，峰对应 Tm 值也在 70-80℃之间。故会在 80℃以前出现双峰）。

解决方案：进行高分辨率琼脂糖电泳，检测有无目的条带，以确定模板是否加入。优化方法：新配制无误的反应体系，重新实验。

Q10:为什么是单峰，但峰不尖锐？

A:可能原因：存在大小相近的非特异性扩增

解决方案：a）温度跨度不高于 7℃，视为可用结果（即 Tm 值跨度＜7℃可认为是同一种产物）；

b）进行高浓度琼脂糖电泳（高分辨率），确认是否为单一条带。

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