普鲁士蓝染色试剂盒(铁染色) 普鲁士蓝法铁染色|Prussian Blue Iron Stain Kit
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COA
已发表文献
正常骨髓中存在一定量的储存铁，以含铁血黄素的形式储存于组织巨噬细胞中，可供有核红细胞利用合成血红蛋白，这种存在于红细胞以外的储存铁称为细胞外铁；部分中、晚幼红细胞及少数成熟红细胞也含有铁颗粒，分别称为铁粒幼红细胞及铁粒红细胞，它们属于细胞内铁。
组织学中常使用普鲁士蓝法检测细胞内、外铁，其检测原理是：在酸性条件下亚铁氰化物能与铁离子（三价）结合形成蓝色的亚铁氰化铁沉淀（也即普鲁士蓝），定位于含铁部位，该法也是诊断学中检测灵敏度极高的一种铁染色方法。
本试剂盒适用于石蜡切片、冰冻切片、细胞染色。包括脑阔骨髓细胞涂片及血液细胞涂片的染色检查，另配备核固红做复染以区分含铁部位及细胞其他部位。
产品组分
|
组分编号 |
组分名称 |
产品编号/规格 |
|
|
60533JP20（20 T） |
60533JP60（100 T） |
||
|
60533-A |
Fixation Buffer固定剂 |
20 mL |
100 mL |
|
60533-B |
Potassium Ferrocyanide Solution亚铁氰化钾溶液 |
20 mL |
100 mL |
|
60533-C |
Acid Solution酸性反应液 |
20 mL |
100 mL |
|
60533-D |
Nuclear Fast Red solution 核固红溶液 |
20 mL |
100 mL |
运输和保存方法
冰袋运输。4 ℃避光保存。有效期1年。
注意事项
1）使用前应恢复室温，用前请摇匀试剂。
2）工作液现配现用。
3）所有玻片及器具应洁净、无铁污染（事先经除铁处理，尤其是载玻片），Perls stain染色时，应根据样本情况调整着色时间。
4）切片脱蜡应尽量干净。组织固定常采用10%中性福尔马林，经普通福尔马林长期固定后，组织会有损伤。避免使用酸性固定剂，铬酸盐处理也会妨碍铁的保存。
5）所有切片都应使用同一个阳性对照切片，选择适合的对照非常重要。尸检肺组织是一个很好的对照，包含相当数量的铁阳性巨噬细胞(心衰细胞)。
6）每次试剂使用后，请迅速盖好密封保存，以免挥发及影响效果。
7）本试剂盒仅限于形态学染色观察使用。
8）冰冻切片和细胞染色，最好根据具体情况摸索实验条件。
9）为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
10）本产品仅用于科研用途。
使用方法
工作液配制
临用前，取B和C等量混合即为Perls stain，不宜提前配制。
样品染色
（一）石蜡切片染色：
1、组织固定于Fixation Buffer固定剂中，常规脱水包埋。
2、切片厚度4 μm，常规脱蜡至水。
3、蒸馏水水洗1 min。
4、切片入Perls stain (见注意事项3)，浸染20～40 min。
5、蒸馏水充分冲洗2～5 min。
6、入核固红染色液，淡染细胞核1～5 min。
7、自来水冲洗1～5 s。
8、常规脱水透明，中性树胶封固.
（二） 冰冻切片染色：
1、无需脱蜡，直接迅速用蒸馏水冲洗2～3 min。
2、染色、封固步骤同石蜡切片的染色步骤，时间可以相应缩短。
（三）细胞染色：
1、Fixation Buffer固定剂固定10～20 min。
2、自来水冲洗2次，每次2 min。
3、蒸馏水冲洗2次，每次2 min。
4、染色、封固步骤同石蜡切片的染色步骤，但操作时间应相应延长。
结果参考
含铁血黄素或三价铁，结果呈蓝色；细胞核、其他组织，结果呈红色。
阴性对照
取相同切片脱蜡至水。入5%草酸孵育2～6 h，经Perls stain，其余步骤同上。结果为阴性。
相关产品
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产品名称 |
货号 |
规格 |
|
Hematoxylin stain solution 苏木素染色液 |
60502JP50/60/76 |
50 ml/100 ml/500 ml |
|
Alizarin red S 茜素红 |
60504JP25 |
25 g |
|
Crystal Violet 结晶紫 |
60505JP25 |
25 g |
|
Crystal Violet Stain Solution (0.5%) 0.5%结晶紫染色液 |
60506JP60 |
100 ml |
|
TTC 2,3,5-氯化三苯基四氮唑 |
60508JP25 |
25 g |
|
Bromocresol Purple 溴甲酚紫 |
60509JP25 |
25 g |
|
Hematoxylin and Eosin Staining Kit 苏木素伊红（H&E）染色试剂盒 |
60524JP60 |
2×100 ml |
HB210713
正常骨髓中存在一定量的储存铁，以含铁血黄素的形式储存于组织巨噬细胞中，可供有核红细胞利用合成血红蛋白，这种存在于红细胞以外的储存铁称为细胞外铁；部分中、晚幼红细胞及少数成熟红细胞也含有铁颗粒，分别称为铁粒幼红细胞及铁粒红细胞，它们属于细胞内铁。
组织学中常使用普鲁士蓝法检测细胞内、外铁，其检测原理是：在酸性条件下亚铁氰化物能与铁离子（三价）结合形成蓝色的亚铁氰化铁沉淀（也即普鲁士蓝），定位于含铁部位，该法也是诊断学中检测灵敏度极高的一种铁染色方法。
本试剂盒适用于石蜡切片、冰冻切片、细胞染色。包括脑阔骨髓细胞涂片及血液细胞涂片的染色检查，另配备核固红做复染以区分含铁部位及细胞其他部位。
产品组分
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组分编号 |
组分名称 |
产品编号/规格 |
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60533JP20（20 T） |
60533JP60（100 T） |
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60533-A |
Fixation Buffer固定剂 |
20 mL |
100 mL |
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60533-B |
Potassium Ferrocyanide Solution亚铁氰化钾溶液 |
20 mL |
100 mL |
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60533-C |
Acid Solution酸性反应液 |
20 mL |
100 mL |
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60533-D |
Nuclear Fast Red solution 核固红溶液 |
20 mL |
100 mL |
运输和保存方法
冰袋运输。4 ℃避光保存。有效期1年。
注意事项
1）使用前应恢复室温，用前请摇匀试剂。
2）工作液现配现用。
3）所有玻片及器具应洁净、无铁污染（事先经除铁处理，尤其是载玻片），Perls stain染色时，应根据样本情况调整着色时间。
4）切片脱蜡应尽量干净。组织固定常采用10%中性福尔马林，经普通福尔马林长期固定后，组织会有损伤。避免使用酸性固定剂，铬酸盐处理也会妨碍铁的保存。
5）所有切片都应使用同一个阳性对照切片，选择适合的对照非常重要。尸检肺组织是一个很好的对照，包含相当数量的铁阳性巨噬细胞(心衰细胞)。
6）每次试剂使用后，请迅速盖好密封保存，以免挥发及影响效果。
7）本试剂盒仅限于形态学染色观察使用。
8）冰冻切片和细胞染色，最好根据具体情况摸索实验条件。
9）为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
10）本产品仅用于科研用途。
使用方法
工作液配制
临用前，取B和C等量混合即为Perls stain，不宜提前配制。
样品染色
（一）石蜡切片染色：
1、组织固定于Fixation Buffer固定剂中，常规脱水包埋。
2、切片厚度4 μm，常规脱蜡至水。
3、蒸馏水水洗1 min。
4、切片入Perls stain (见注意事项3)，浸染20～40 min。
5、蒸馏水充分冲洗2～5 min。
6、入核固红染色液，淡染细胞核1～5 min。
7、自来水冲洗1～5 s。
8、常规脱水透明，中性树胶封固.
（二） 冰冻切片染色：
1、无需脱蜡，直接迅速用蒸馏水冲洗2～3 min。
2、染色、封固步骤同石蜡切片的染色步骤，时间可以相应缩短。
（三）细胞染色：
1、Fixation Buffer固定剂固定10～20 min。
2、自来水冲洗2次，每次2 min。
3、蒸馏水冲洗2次，每次2 min。
4、染色、封固步骤同石蜡切片的染色步骤，但操作时间应相应延长。
结果参考
含铁血黄素或三价铁，结果呈蓝色；细胞核、其他组织，结果呈红色。
阴性对照
取相同切片脱蜡至水。入5%草酸孵育2～6 h，经Perls stain，其余步骤同上。结果为阴性。
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60502JP50/60/76 |
50 ml/100 ml/500 ml |
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Alizarin red S 茜素红 |
60504JP25 |
25 g |
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Crystal Violet 结晶紫 |
60505JP25 |
25 g |
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Crystal Violet Stain Solution (0.5%) 0.5%结晶紫染色液 |
60506JP60 |
100 ml |
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25 g |
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Bromocresol Purple 溴甲酚紫 |
60509JP25 |
25 g |
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60524JP60 |
2×100 ml |
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[1] Bao Z, Liu Y, Chen B, et al. Prokineticin-2 prevents neuronal cell deaths in a model of traumatic brain injury. Nat Commun. 2021;12(1):4220. Published 2021 Jul 9. doi:10.1038/s41467-021-24469-y(IF:14.919)
[2] Rui T, Wang H, Li Q, et al. Deletion of ferritin H in neurons counteracts the protective effect of melatonin against traumatic brain injury-induced ferroptosis. J Pineal Res. 2021;70(2):e12704. doi:10.1111/jpi.12704(IF:14.528)
[3] Niu S, Zhang LK, Zhang L, et al. Inhibition by Multifunctional Magnetic Nanoparticles Loaded with Alpha-Synuclein RNAi Plasmid in a Parkinson's Disease Model. Theranostics. 2017;7(2):344-356. Published 2017 Jan 1. doi:10.7150/thno.16562(IF:11.556)
[4] Mu D, Wang W, Li J, et al. Ultrasmall Fe(III)-Tannic Acid Nanoparticles To Prevent Progression of Atherosclerotic Plaques. ACS Appl Mater Interfaces. 2021;13(29):33915-33925. doi:10.1021/acsami.1c09480(IF:9.229)
[5] Xu R, Huang Y, Zhu D, Guo J. Iron promotes Slc7a11-deficient valvular interstitial cell osteogenic differentiation: A possible mechanism by which ferroptosis participates in intraleaflet hemorrhage-induced calcification [published correction appears in Free Radic Biol Med. 2022 May 9;186:31]. Free Radic Biol Med. 2022;184:158-169. doi:10.1016/j.freeradbiomed.2022.03.013(IF:7.376)
[6] Shi Y , Gao Y , Zou X , Chen L , Li Y . Imaging of carotid artery inflammatory plaques with superparamagnetic nanoparticles and an external magnet collar. J Mater Chem B. 2017;5(4):797-806. doi:10.1039/c6tb02849g(IF:4.872)
[7] Cheng Y, Qu W, Li J, et al. Ferristatin II, an Iron Uptake Inhibitor, Exerts Neuroprotection against Traumatic Brain Injury via Suppressing Ferroptosis. ACS Chem Neurosci. 2022;13(5):664-675. doi:10.1021/acschemneuro.1c00819(IF:4.418)
[8] Xin L, Huang B, Zhang H, Li C, Bai C, Wang C. OsHV-1 infection leads to mollusc tissue lesion and iron redistribution, revealing a strategy of iron limitation against pathogen. Metallomics. 2019;11(4):822-832. doi:10.1039/c9mt00018f(IF:3.571)